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代做实验Rnai 慢病毒包装
代做实验Rnai 慢病毒包装
一
、
Rnai
慢病毒包装意义
慢病毒(Lentivirus)载体是以HIV-1(人类**缺陷I型病毒)为基础发展起来的基因**载体。和一般的逆转录病毒载体不同,它对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力。该载体可以将外源基因有效地整合到宿主染色体上,从而达到持久性表达。并且它可以有效地感染神经元细胞、肝细胞、心肌细胞、肿瘤细胞、内皮细胞、干细胞等多种类型的细胞,因此具有广阔的应用前景。而Rnai大都是由慢病毒介导的。
二
、
Rnai
慢病毒包装原理
目前慢病毒被广泛地应用于RNAi的研究中。由于体外合成siRNA对基因表达的抑制作用通常是短暂的,因而使其应用受到较大的限制。采用事先在体外构建能够表达siRNA的载体, 然后转入细胞内转录siRNA的策略,不但对基因表达抑制效果不逊色于体外合成siRNA,而且稳定整合表达载体的细胞中,可以发挥长期阻断基因表达的作用。但上述两种方法,一是受到转染试剂转染效率的影响,在一些细胞内无法有效敲低(Knockdown)一些基因;二是传统方法得到稳定细胞株通常需要挑取单克隆,进行克隆化,这样费时费力。利用慢病毒介导的方法可以解决上述问题,这是因为慢病毒介导的RNAi具有下述优点:
**,慢病毒几乎可以感染所有种类的细胞,不存在某些细胞难以转染的问题。**,慢病毒可以在细胞基因组上稳定整合表达siRNA的元件,siRNA表达效率比较均一,因此,无需挑取单克隆。第三,慢病毒载体具有嘌罗霉素(Puromycin)抗性基因,Puromycin可以在2-3天内杀死细胞,只有整合了病毒载体的细胞能够存活,这样缩短了得到稳定细胞株的时间。
三
、
Rnai
慢病毒包装实验步骤
以六孔板中的
1
孔为例,每个样品需要
1×10
∧
6
个
293FT
细胞,慢病毒包装简要程序:
1
、取
1.5ml
**
EP
管,加入
1.5μg
包装混合质粒和
0.5μg
表达质粒以及
250μl
的无血清
Opti MEM
。轻柔混匀,室温孵育
5min
。
2
、取
1.5ml
**
EP
管,取
9μl
脂质体
2000l
溶于
250μl
无血清
Opti-MEM I
培养基中。轻柔混匀,室温孵育
5min
。
3
、将
DNA
溶液和脂质体溶液轻柔混匀。室温孵育
20min
4
、用胰酶消化并记数
293FT
细胞。用含血清的
DMEM
培养基重悬细胞。
5
、在六孔板中每孔,加入
1ml
含血清的生长培养基,再加入
DNA-
脂质体复合物。
6
、将
1ml
重悬的
293FT
细胞(
1×10
∧
6
个细胞
/ml
)加入到平板中。
37
℃
CO2
孵箱中孵育过夜。
7
、移除含有
DNA-
脂质体复合物的培养基移除,代之以
DMEM
(含丙酮酸钠和非必须氨基酸)。
7
、转染后
48-72h
收获含病毒的上清。
3000 rpm
离心
20min
,去除沉淀。
8
、病毒上清
-80°C
贮存。
包装出来的慢病毒对
NIH/3T3
细胞达
90%
以上感染效率。
四
、
Rnai
慢病毒包装存在的问题
尽管慢病毒载体的研究有了很大进展,但距离临床应用还有很长的路要走。首先,重组病毒的滴度还不够高,除Naldini等报道的结果外,其余均在101TU/ml~103TU/ml之间,难以达到体内应用的需要;其次,由于HIV复杂的生物学性质,要像目前常用的小鼠逆转录病毒载体那样建立稳定的HIV载体包装细胞十分困 难,已建立的包装细胞均不理想。据报道,Vpr是一种使细胞进入静止期的强诱导剂,也是建立包装细胞的主要障碍之一。如果确如前文所述,包装质粒中的vpr基因并非必需、去除后不影响载体的转导能力,则建立稳定的包装细胞是大有希望的。
在保证HIV-1载体的**性上,迄今已做了种种努力,要产生有复制力的HIV,必须在不同的质粒上发生多次非同源重组事件。即使如此,一旦用于人体试验,仍然不能打消人们对感染有复制力的HIV-1的顾虑。更为谨慎的做法是,以非人类的慢病毒为基础构建载体,如猴**缺损病毒(SIV)、猪和牛**缺损病毒(FIV和BIV)、马传染性贫血病病毒等,而目前这些工作尚属空白。
Rnai
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