代做**组化实验
一、 **组化的目的
**组化技术是一种综合定性、定位和定量;形态、机能和代谢密切结合为一体的研究和检测技术。在原位检测出病原的同时,还能观察到组织病变与该病原的关系,确认受染细胞类型,从而有助于了解**的发病机理和病理。
二、 **组化的原理
**组化是利用抗原抗体反应,即抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂 (荧光素、酶、金属离子、同位素) 显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及定量的研究。
三、 **组化的步骤
1、脱蜡:脱蜡前应将组织芯片在室温中放置60min,或60℃恒温箱中烘烤20min,后用二甲苯(Ⅰ)、(Ⅱ)浸泡,共25min 。
2、水化:无水酒精(Ⅰ)、(Ⅱ)各2min,下行至95%、80%、70%酒精(Ⅰ)(Ⅱ)各2min 。
3、PBS冲洗2-3次,每次5min 。
4、阻断:3%H2O2去离子水(或80%甲醇)孵育10min,以灭活内源性过氧化物酶活性 。
5、PBS冲洗2-3次,每次5min 。
6、抗原修复:置0.01M枸橼酸缓冲液(PH 6.0)中用煮沸(95℃,15-20min),自然冷却20min以上,再用冷水冲洗缸子,加快冷却至室温 。
7、PBS冲洗2-3次,每次5min 。
8、封闭:滴加正常山羊血清封闭液,室温孵育20min,甩去多余液体 。
9、滴加Ⅰ抗50μl,室温静置1h,或者37℃1h,或者4℃过夜(需在37℃复温45min)。
10、PBS冲洗2-3次,每次5min 。
11、滴加辣根过氧化物酶标记的Ⅱ抗40~50μl,室温静置1h,或37℃1h 。
12、PBS冲洗2-3次,每次5min 。
13、滴加SP(链霉亲和素-过氧化物酶),室温或37℃孵育30min-1h 14、PBS冲洗2-3次,每次5min。
15、显色:DAB显色5-10min,在显微镜下掌握染色程度(胞浆呈棕色者判定为阳性细胞) (显色剂的配置:在1ml水中加1滴显色剂A,摇匀,然后加1滴显色剂B,摇匀,再加1滴显色剂C,摇匀) (A:DAB B:H2O2 C:磷酸缓冲液)。
16、自来水冲洗10分钟终止反应 。
17、复染:苏木精复染2min,盐酸酒精分化。
18、自来水冲洗10-15min。
19、常规脱水、透明、封片(用中性树胶滴在组织旁边,再用盖玻片盖上)、镜检。
四、 **组化的常见问题及分析
1、 石蜡切片在染色过程中出现脱片现象
1)烤片时间不够,或温度不够,可以延长烤片时间和提高烤片温度;
2)用含有多聚赖氨酸的玻片,可以购买到或这自己做;
2、边缘效应
组织边缘与玻片粘贴不牢,边缘组织松脱漂浮在液体中,每次清洗不易将组织下面试剂洗尽所致. 解决办法:制备上等的胶片(APES或多聚赖氨酸),切出尽量薄的组织切片,**于4微米,组织的前期处理应规范,尽量避免选用坏死较多的组织;
3、产生组织切片非特异性染色
1)抗体孵育时间过长、抗体浓度高易增加背景着色。这可通过缩短一抗/二抗孵育时间、稀释抗体来控制。这是*重要的一条;
2)一抗用多克隆抗体易出现非特异性着色,建议试用单克隆抗体看看;
3)内源性过氧化物酶和生物素在肝脏、肾脏等组织含量很高(含血细胞多的组织),需要通过延长灭活时间和增加灭活剂浓度来降低背景染色;
4、**组化染色呈阴性结果
1)抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误;
2)抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合;建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验,这是*佳的时间和次数。若不行,还可高压修复;
3)组织切片本身这种抗原含量低;
5、背景
1)考虑一抗浓度高;
2)然后调整DAB孵育时间;
**组化技术服务
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