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实验外包-Masson 三色染色试剂盒说明书
实验外包
-Masson
三色染色试剂盒说明书
Masson
氏染色时胶原纤维呈蓝色(被苯胺蓝所染)或绿色(被亮绿所染),肌纤维呈红色(被酸性品红和丽春红所染),这与阴离子染料分子的大小和组织的渗透性有关。如已固定的组织用一系列阴离子水溶性染料先后或混合染色,则可发现红细胞被*小分子的阴离子染料着染,肌纤维与胞质被中等大小的阴离子染料着染,而胶原纤维则被大分子的阴离子染料着染。由此说明了红细胞对阴离子染料的渗透性*小,肌纤维与胞质次之,而胶原纤维具有*大的渗透性。I型、III型胶原呈绿色(GBM、TBM、系膜基质及肾间质呈绿色),嗜复红蛋白、肾小管胞质、红细胞呈红色。
【产品介绍】
Masson
染液是显示组织中纤维染色的主要方法之一,是胶原纤维染色权威而经典的技 术方法。该法染色原理与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关。分子的大小由分子量来 体现,小分子量易穿透结构致密、渗透性低的组织,而大分子量则只能进入结构疏松的、渗 透性高的组织。淡绿分子量*大。因此
Masson
染色肌纤维红色,胶原纤维绿色,主要用于 区分胶原纤维和肌纤维。
【用途】主要用于胶原纤维染色。
【产品特点】
①染色稳定;②分化时间短,1~2 分钟;③色彩清晰鲜艳;④适用范围广,适宜于组织的 石蜡切片、冰冻切片等染色;⑤所染切片保存时间长且不易褪色。
固定:甲醛升汞或甲醛盐溶液。
切片:所有类型。
【产品组成】
编号 名
SBJ
0
126
(7×50ml)
SBJ
0
126
(7×100ml)
SBJ
0
126
(7×500ml)
Storage
试剂(A)
A1
:苏木素染色液
25ml
100ml
500ml
RT
A2
:三氯化铁水溶液
25ml
100ml
500ml
RT
临用时取 A1、A2 等量混合,成为试剂(A),不可预先配制后放置,因染色液的色素根与铁会化合,形成不容性沉淀,等量混合后,一般 24h 后失去染色力。
试剂(B): 盐酸乙醇分化液
50ml
100ml
500ml
RT
试剂(C): 氨水水溶液
50ml
100ml
500ml
RT
试剂(D): 丽春红酸性品红染色液
50ml
100ml
500ml
RT
试剂(E): 乙酸水溶液
50ml
100ml
500ml
RT
试剂(F): 磷钼酸水溶液
50ml
100ml
500ml
RT
试剂(G): 苯胺蓝染色液
50ml
100ml
500ml
RT
【参考操作步骤】
1、切片脱蜡至水。
2、试剂(A)染色 5min~10min。
3、试剂(B)分化、水洗,试剂(C)返蓝、水洗。
4、蒸馏水或者去离子水洗 1min。
5、试剂(D)染色 5~10min。
6、试剂(E)洗 1min。
7、试剂(F)洗 1~2min。
8、试剂(E)洗 1min。
9、直接放入试剂(G)染色 1~2min。
10、试剂(E)洗 1min。
11、95%乙醇和无水乙醇脱水、二甲苯透明、中性树胶封固。
【染色结果】
细胞核呈蓝色,胞浆、肌肉、红细胞呈红色,胶原蛋白呈蓝色。
【贮存】
本试剂盒应置 2℃~25℃,
Masson
A、D、F、G 液需要避光保存。
【注意事项】
1、 组织固定起着非常重要的作用,使用不同的固定液可延或缩短染色时间。
2、 一般要求试剂(A)染核,也可用 Harris 苏木精染核,但染核后切片颜色不够鲜艳。
3、 试剂(F)分化要在镜下控制,分化到胶原纤维呈淡红色,纤维呈红色即可,分化时间根 据染色深浅而定,一般 1~2min。
4、 试剂(E)为 0.2%乙酸水溶液,可使色彩更清晰鲜艳,如果使用量大可自行配制。
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实验外包
- Masson
染色
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