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它具有下列特点：
成分规格
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Buffer GL |
15ml |
25ml |
50ml |
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Buffer W1（concentrate） |
13ml |
26ml |
52ml |
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Buffer W2（concentrate） |
15ml |
30ml |
60ml |
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Buffer EBE（DNase/RNase-Free） |
10ml |
10ml |
30ml |
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Proteinase K |
1ml |
2×1ml |
4×1ml |
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Spin Column with Collection Tubes |
50套 |
100套 |
200套 |
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蛋白酶 K 于-20℃ ，其他组分室温（15 - 25℃），可保存12 个月 |
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本产品仅供科研使用，不得用于其它用途 |
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使用方法
自备试剂
无水乙醇。
（注 意：使用前请先在缓冲液 Buffer RW1 和 Buffer RW2 中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签）
1. 取 1.5 ml 离心管（自备），加入 20 μl 的 Proteinase K 溶液。
2. 向离心管中加入 200 μl 血清、血浆、病毒拭子保存液或病毒原液、无细胞体液等，再加入 200 μl Buffer GL，涡旋震荡充分混匀。3. 56℃孵育 10 min，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
4. 加入 250 μl 无水乙醇，涡旋震荡 15 sec，室温放置 5 min，使溶液温度降至室温，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
(注 意：如果环境温度超过 25℃，无水乙醇应在冰上预冷后使用。)
5. 将一个吸附柱放入收集管中，将上一步所得溶液转移到离心吸附柱中，12,000rpm离心 30 sec，弃收集管中的滤液。
6. 向吸附柱内加入 500 μl 的 Buffer RW1，室温 12,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中滤液。
（注 意：在 Buffer RW1 浓缩液中按要求加入无水乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发）
7. 向吸附柱内加入 600 μl 的 Buffer RW2，室温 10,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中滤液。
（注 意： Buffer RW2 按要求加入无水乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发；如需进一步提高核酸纯度，可重复步骤 7 一次。）
8. 室温 12,000 rpm 离心 2 min，甩干残留液体。
（注 意：此步不能省略，否则残留乙醇会影响基因组 DNA/RNA的后续使用）
9. 将离心吸附柱置于一个干净的离心管中，小心打开吸附柱的盖子，室温放置2min，使吸附膜完全变干。
10. 加入 30 - 100 μl Buffer RE 或 DEPC-ddH2O，室温放置 2 min。12,000 rpm离心1min，离心管底溶液即病毒 DNA/RNA。
（注 意：为增加洗脱效率，可将得到的溶液重新加入到离心管中，室温放置2 min，再次离心收集）
注意事项
