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纯化的原代细胞方法

原代细胞分离的方法有多种,常用的是机械解离细胞法、酶学解离细胞法以及螯合剂解离细胞法,下面我们就介绍酶解聚方法获得纯化的原代细胞。

一、胰蛋白酶 纯化法


1.在去除不需要的组织后,使用无菌的解剖刀和剪子把剩余的组织切成3~4 mm小片,通过悬浮在无钙镁的平衡盐溶液中清洗组织碎片。让组织碎片沉淀,去除上清液。重复清洗2到3次。


2.将盛有组织碎片的容器置于冰上,去除残留的上清液。加入0.25%溶解在无钙镁的平衡盐溶液中的胰蛋白酶(100 mg组织加入1ml 胰蛋白酶)。


3.在4℃孵育6到18小时,使几乎没有胰蛋白酶活性的酶尽可能渗透进去。


4.移弃组织碎片中的胰蛋白酶,在37℃孵育包含残留胰蛋白酶的组织碎片20到30分钟。


5.在组织碎片加入热的完全培养基,用移液管轻轻地分散组织。如果使用无血清培养基,要加入大豆胰蛋白酶抑制剂。


6.通过无菌不锈钢丝网(100~200 mm)过滤,分散所有剩余组织。计数和接种细胞,进行培养。


二、胶原酶纯化法


1.用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成3~4 mm小片,用Hanks'平衡液(HBSS)清洗组织碎片几次。


2.加入胶原酶(50~200单位/ml,溶解在HBSS中)。


3.在37℃孵育4到18小时。加入3mM CaCl2增加解离效率。


4.通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液,以分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。如果需要进一步的解聚,在碎片中加入新鲜的胶原酶。


5.通过离心在HBSS中清洗悬液几次。


6.再一次在培养基中悬浮细胞,计数和接种细胞,进行培养。


三、Dispase纯化法


1.用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成3~4 mm小片,用不含钙镁的平衡盐溶液清洗组织碎片几次。


2.加入Dispase(0.6~2.4单位/ml 溶解在无钙镁的平衡盐溶液)


3.在37℃孵育20分钟到几个小时。


4.通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液,以分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。如果需要进一步的解聚,在碎片中加入新鲜的Dispase。


5.通过离心在平衡盐溶液中清洗悬液几次。


6.再一次在培养基中悬浮细胞,计数和接种细胞,进行培养。