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脂质体2000转染细胞注意事项及常见问题解答!

发布时间:2014-06-11

LIPOFECTAMINE 2000转染细胞注意事项及常见问题解答:

1. 细胞的状态,这点非常重要,不要急于求成,一定要让细胞处于*佳的生长状态再做。一般细胞复苏后的3代左右细胞状态*好,不要用传了很多代的细胞去做,细胞的形态都会发生变化了。
2.细胞的融合度,说明书上写的细胞的融合度要达到90%才能做啊,你的才70%,细胞太少,肯定容易死的。建议接种密度是3~4*105/ml.

3.无血清培养基OPTI-MEM(GIBICO)很好用,有无血清培养基的话,就用它代替PBS洗细胞两遍。注意洗的时候要轻,靠边缘加入液体,然后不要吹吸细胞,而是转动培养板让液体滚动在细胞表面。如果洗的太厉害,细胞又损失一部分,当然加了脂质体,细胞受影响就更大了。

4.加入无血清培养基后5~6小时更换全培养基。18小时毒性时间太长了!

5.转染的质粒一定纯度好、浓度高、无内**。浓度不要低于0.35ug/ul。

不知道你用的是不是invitrogen的LIPOFECTAMINE 2000,感觉你的方法无论是几孔板的体系都跟我的一点都不一样啊!以下是以6孔板为例说明一下操作实验体系:

 溶液1:240ul 无血清培养基 + 10 ul LIPOFECTAMINE 2000 per well (总体积250 ul)(温育5min)
 溶液2:X ul 无血清培养基 + 4 ug 质粒 per well(总体积250 ul)

 将溶液1与溶液2混合,室温下置20min。

 无血清培养基冲洗细胞两遍后加入2ml 无血清培养基。

 将溶液1与溶液2的混合液逐滴加入孔中,摇动培养板,轻轻混匀。在37℃,5%的CO2中保温24-72小时。

 48小时mRNA表达*高;72h蛋白表达*高。

脂质体2000转染293ft细胞注意事项及常见问题解答:

 

293细胞 总有一种转染方法适合你!
问: 我用LIPOFECTAMINE 2000转染 293ft细胞,细胞老是死亡,是什么原因?

Day 0:细胞传代后计数、seed 2.0x105Cell s and 1.0x106 cells per well of plate

Day 1:细胞达到70%汇合后准备:溶液1:200ul 无血清培养基 + 4 ul LIPOFECTAMINE 2000per well

溶液2:200ul 无血清培养基 + 1 ug GFP per well

将溶液1与溶液2混合,室温下置30min后加入600ul无血清培养基;PBS 冲洗细胞后每well加入500ul 混合的溶液。

Day 2:18小时后用PBS 冲洗细胞,加入含10%血清的培养基。隔天观察细胞绿色荧光。

但是做到Day 1的时候,即加入lipofectamine后细胞就死亡了,后来老板说可能时间太长了,改18小时为4小时,但293ft细胞还是死亡。

答1:脂质体量多了,我们用说明书上的一半量,效果很好,但是质粒 要先测浓度.还有可能是时间久了,一般4-6小时后就要到掉脂质体,换为有血清和双抗的培养基,并且要用**抗血清的培养基孵育lip5分钟以上

答2:建议用磷酸钙系统转染.通常293都是用该系统转染的,且效率很高,但要注意防止污染.2005年的Nature methods上有经典步骤.祝顺利!

答3:我个人也碰到类似的情况,曾与INVITROGEN的技术支持反映过此问题,对方的回应【原始邮件没有找到】认为主要是lipo2K的毒性问题,其中特别强调了:

1. 取LIPOFECTAMINE 2000时,一定要将LIPOFECTAMINE 2000轻轻混匀,以确保你吸取的LIPOFECTAMINE 2000浓度是正确的,不会过高或过低。当没有混匀,虽然你吸取的是4ul,但由于你吸取的lipofectamine 2000浓度可能较高,会造成严重的细胞毒性;

2. 细胞密度问题:说明书上建议是细胞达到90%左右汇合时进行,这样可以减少LIPOFECTAMINE 2000的毒性。如果细胞密度较低,如70%,会造成较为严重的毒性,而使细胞死亡。

同时建议:

1. 由于293的转染效率非常高,细胞生长也非常旺盛,因此,打到95%左右汇合时转染,可能时比较高的平衡点(细胞毒性与转染效率的平衡点)

2. 转染时间4h没问题。

3. 你没有说你是用什么培养板,500ul/well,可能是24well-plate。如果不是,应该按说明书进行,英文版的LIPOFECTAMINE 2000说明书点这下载);

4. LIPOFECTAMINE 2000转染时的培养基是可以含血清的,如果上述建议仍然无效,你可以试试,将“转染混合液”加入含有血清的培养基培养的293细胞孔中。【配制转染混合液还是用无血清的,*好是opti-mem。

如果是6孔板,你转染混合液加入的是每孔500ul,这样的体积对6孔板而言,几乎是可以覆盖细胞单层的下限,有可能会造成孔中央的细胞缺乏培养基。因此,建议你还是按说明书的来,2ml/well。

在你没有得到好结果前,要认真按说明书进行,而不要根据自己的臆想进行所谓的优化实验,更改参数。祝各位老师实验顺利!

 

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