众所周知细胞培养基的种类繁多,细胞培养方式也较多,如何正确地使用培养基及*大程度地保持培养基的营养以维持细胞的生长,对每个培养者都很重要。培养基的使用依不同的培养基种类、培养方式、细胞种类的不同而存在差异。
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在进行细胞培养操作之前呢,我们先来了解一些细胞的基本知识吧!
组织培养实际的保存会影响培养物的生长速度!
动物血清应储存于–5至–20°C。培养基储存于2至8°C;请在推荐的保质期内用完。请将完全培养基(加入添加剂)保存于2 至 8°C,推荐的存放期限为2至4周。此外,尽量减少血清和培养基暴露于光线下的时间。
细胞培养过程*重要的有两点:一是无菌无污染;二是稳态环境。
无菌操作:无菌操作很重要,这对细胞培养影响很大。不要以为加入双抗或三抗就可以了。双抗或三抗的添加不仅对细菌或真菌的耐受性增加了,更容易染菌。其次抗生素添加的含量对细胞生命代谢是有一定的毒性作用的,尤其是在做转染的时候。
那么无菌操作该怎么做才能尽可能的防止被污染?
首先是超净工作台的摆放已以及及时灭菌。里面应尽可能少摆放一些没用的东西,比如枪头、离心管等。工作台内右边摆放一瓶75%的酒精,左边摆放一包无菌擦拭纸,15ml和50ml两个管架,正前方摆放各量程的移液枪,以及一盏酒精灯。每次使用前后均用75%酒精喷洒,擦手纸擦拭,紫外含臭氧灭菌30min。
其次是操作过程的细节注意。将培养基经过75%酒精擦拭后放入工作台的左边,垃圾桶喷洒75%酒精后放在*右边,枪头喷洒75%酒精放于右中间,含有细胞的培养瓶75%酒精擦拭后放置于左中间,将酒精灯放于正中间并点燃,培养瓶打开过火放于酒精灯旁开始传代或换液等操作。整个过程尽可能靠近火源,以*快的速度操作完。
*后培养箱每隔一段时间进行清洗消毒灭菌操作,保证培养环境无菌。
稳态环境的培养:培养基和血清的的选择很重要,一般能用进口尽量选择进口的。国内很多产品处理的效果不如国外的,对于原代细胞培养尤为重要。买来的培养基和血清应及时分装以保证无菌。切勿使用37℃水浴加热,应在4℃冰箱慢慢融化,避免影响血清的质量。血清*好使用胎牛血清,添加含量为10%,不宜过高,短时间可以,长时间容易毒害细胞造成细胞分化和衰老。
细胞培养过程不能过于频繁换液,应隔3天左右更换或者培养基颜色变黄,所以应每天都去观察细胞生长的状态,及时处理。
拿到小鼠Mo-MuLv感染的3T3细胞细胞后,应该注意什么?
收到小鼠Mo-MuLv感染的3T3细胞细胞后先不要开盖,放在培养箱静置若干小时后(看细胞密度而定)在倒置显微镜下观察小鼠Mo-MuLv感染的3T3细胞细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照(建议对收细胞时的培养基拍一张照片,观察培养基的颜色和是否有漏液情况,显微镜下拍细胞100X,200X各一张),排除细胞本身污染的情况。
收到小鼠Mo-MuLv感染的3T3细胞细胞时如无异常情况,请在显微镜下观察细胞密度:如为贴壁细胞,未超过80%汇合度时,将培养瓶中培养液吸出,留下10ml培养液继续培养,剩余培养液可与新配制的培养液按一定的比例混合使用,待细胞生长稳定后可替换成新配制的培养液;超过80%汇合度时,请按细胞培养条件传代培养。如为悬浮细胞,吸出培养液、1000转/分钟离心2分钟,吸出上清,管底细胞用新鲜培养基悬浮细胞后移回培养瓶。
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