RNEEC/HL-036 是从正常大鼠子宫内膜组织中分离、培养并通过永生化技术(如病毒转染 hTERT)构建的细胞系,由中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏,资源生成于 2021 年。作为**保藏细胞,其生物学特性虽未完全公开,但经严格质控证实:细胞形态呈典型上皮样特征,贴壁生长时呈多边形或铺路石样排列,细胞核大而圆,细胞质丰富;免疫表型检测显示表达子宫内膜特异性标志物,如雌激素受体 α(ERα)、孕激素受体(PR)及细胞角蛋白 18(CK18),不表达间充质标志物(如 Vimentin),证实其上皮细胞属性。该细胞系无致瘤性,传代稳定性良好(建议传代≤20 代),适用于正常子宫内膜生理及病理机制研究。
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培养基优化
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基础配方:推荐使用子宫内膜细胞专用培养基(如 EMEM 或 DMEM/F12),添加 10% 胎牛血清(FBS)、10 ng/mL 表皮生长因子(EGF)、1 μg/mL 胰岛素、100 nM 孕酮及双抗(青霉素 100 U/mL + 链霉素 100 μg/mL)。
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激素调控:因子宫内膜细胞对性激素敏感,研究激素相关机制时需使用无血清培养基(如 SFM),并额外添加 10 nM 雌二醇(E₂)和 1 μM 孕酮(P₄)模拟体内周期环境。
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培养环境与传代
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条件控制:37℃、5% CO₂恒温培养箱,湿度≥90%;培养基 pH 值需维持在 7.2~7.4,避免过酸或过碱影响细胞增殖。
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传代策略:当细胞融合度达 80%~90% 时,用 0.25% 胰酶 - EDTA 消��� 1~2 分钟,以 1:2~1:3 比例传代;消化时需密切观察,避免过度消化导致细胞成团或损伤细胞膜表面激素受体。
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冻存与复苏
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冻存液配方:90% FBS + 10% DMSO,按 5×10⁵~1×10⁶ cells/mL 密度分装,经程序降温盒(-80℃过夜)后转入液氮保存,复苏存活率可达 85% 以上。
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质量控制:每批次细胞需通过支原体检测(如 PCR 法)、活细胞计数(台盼蓝染色)及标志物表达验证,确保无交叉污染且表型稳定。
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生殖生理与胚胎着床研究
RNEEC/HL-036 可模拟子宫内膜 “容受性” 窗口期,用于研究胚胎着床的分子机制。例如:
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通过共培养模型探究滋养层细胞(如 JEG-3)与子宫内膜细胞的黏附分子(如 L-selectin、整合素 αvβ3)相互作用;
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利用转录组测序分析雌激素诱导的子宫内膜细胞分泌因子(如白血病抑制因子 LIF)变化,揭示着床失败的潜在靶点。
案例:某团队通过该细胞系发现,孕激素预处理可上调子宫内膜细胞 HOXA10 基因表达,增强其对胚胎的黏附能力,为临床辅助生殖技术中激素用药提供了理论依据。
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子宫内膜疾病机制研究
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子宫内膜异位症:与异位内膜细胞系(如 12Z)对比,分析正常与异位细胞的差异表达基因(如 MMPs、VEGF),探讨异位病灶形成的关键信号通路(如 Wnt/β-catenin);
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子宫内膜增生 / 癌变:通过致癌物(如雌二醇衍生物)处理,诱导细胞异常增殖,结合免疫印迹检测 p53、PI3K/AKT 等通路变化,构建癌前病变体外模型。
案例:在子宫内膜炎研究中,利用脂多糖(LPS)刺激 RNEEC/HL-036,发现 TLR4/MyD88 通路激活可诱导 IL-6、TNF-α 等促炎因子分泌,为抗生素联合**治疗提供了靶点。
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药物筛选与毒性评估
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激素类药物:测试新型孕激素受体调节剂(如 Ulipristal)对子宫内膜细胞增殖的抑制作用,通过 EdU 染色或 CCK-8 法评估药物效力;
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生殖毒性化合物:检测环境雌激素(如双酚 A)对子宫内膜细胞激素受体表达的干扰,利用 ELISA 法分析雌激素应答基因(如 PS2、CYP19A1)的异常激活。
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种属与个体差异:大鼠子宫内膜的激素响应模式与人存在差异(如大鼠动情周期为 4~5 天,人类为 28 天),涉及临床转化时需结合原代人子宫内膜细胞(hEMs)或动物模型(如大鼠异位移植模型)验证。
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激素微环境模拟:体外培养难以完全重现体内复杂的激素网络(如黄体生成素、前列腺素),建议采用三维培养(如 Matrigel 基质胶)或与成纤维细胞共培养,提升模型生理相关性。
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实验设计要点:研究周期依赖性基因时,需同步化细胞周期(如血清饥饿法);检测分泌蛋白时,需使用无血清培养基孵育以排除血清干扰。
RNEEC/HL-036 作为标准化的正常大鼠子宫内膜细胞模型,为生殖医学、妇科疾病及药物研发提供了重要工具。其应用需结合严格的培养质控、多模型验证及跨物种比较,未来可通过单细胞测序、类器官技术进一步提升研究深度,推动子宫内膜相关疾病的机制解析与精准诊疗。
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