柱式DNAback使用说明书
Column DNAback
产品及特点
本试剂盒用于从琼脂糖凝胶中或DNA反应体系中(如PCR反应)回收DNA片段。试剂盒采用可以高效、专一结合DNA的硅胶膜和独特的溶胶体系,可以从琼脂糖凝胶中或DNA反应体系中高效快速回收DNA片段,回收效率可达50-90%(跟片段大小相关)。本产品的特点如下:
1. 高效,回收效率*高可达90%(跟片段大小和胶浓度等因素有关),可以跟国外有名厂家的产品媲美。
2. 快速,整个过程只需要十余分钟。洗脱液不需要额外加乙醇。
3. 两用,既可用于胶回收,也可以用于PCR或其他酶反应回收。
4. 范围广,回收DNA的长度范围为50 bp-40 Kb(但效率各不相同)。
5. 能回收单链、双链及环状DNA,*大吸附量为10ug。
6. 回收的DNA可直接用于酶切、连接、PCR、测序等多种分子生物学实验。
7. 本试剂盒足够纯化50片含DNA的琼脂糖凝胶条(每片胶条重量不超过250mg),可以纯化50次酶反应(包括PCR反应,每次体积不超过250uL)。
规格及成分
成 份
编 号
50次大纸盒包装
通用溶胶液2.0
170601
25 mL
吸附柱活化液
170602
通用洗柱液
60408
50 mL
离心吸附柱(13层)
170606
50 套
DNA洗脱液3.0
170603
10 mL
使用手册
60202sc
1份
运输及保存
常温运输及保存,有效期为一年。由于通用溶胶液2.0是高盐溶液,因此在低温时容易产生沉淀。如果产生沉淀,需要60℃加热溶解后才可以使用。
自备试剂
异丙醇
使用方法
一:对胶回收:
1. 用干净的刀片切取含DNA片段的琼脂糖凝胶(100 mg左右,尽可能多地把多余的胶切除,否则会影响回收效率),放入一干净的1.5 mL塑料离心管(自备)中称重,按重量比为1:2的比例加入通用溶胶液2.0 (0.1 g的琼脂糖凝胶需要加入0.2mL的通用溶胶液2.0)。如果琼脂糖凝胶的浓度大于2%,则需要按1:3的比例加入通用溶胶液2.0溶解胶块。
2. 50℃保温10分钟使胶完全溶化,每隔2-3分钟振荡数次以促进琼脂糖凝胶的溶化。如果片段长度在300bp以下,建议不要50℃保温,而是延长溶胶时间,以免DNA变性,影响回收率。
3. 在等待期间,活化离心吸附柱。在离心吸附柱中加入0.5mL吸附柱活化液,套上收集管后室温放置2分钟,然后12,000 rpm离心2分钟,倒弃穿透液,再将吸附柱套上收集管后待用。活化后的离心吸附柱必须在当天使用。
4. 在上柱前,在溶化的胶中加入相当于胶块体积1/2的异丙醇(对100mg胶块,加50uL),快速振荡10秒混匀。
5. 将溶液转移到离心吸附柱中,套上收集管,静置3分钟。注意:静置有助于DNA与离心吸附柱的硅胶膜结合。本产品提供的离心吸附柱的*大上样体积为0.8mL,若溶胶液的总体积大于0.8mL,一次加不完,可以分多次将溶液加入到吸附柱中。
6. 12000-15000 g离心1分钟,倒掉收集管中的穿透液。
7. 加入0.7mL通用洗柱液于离心柱中,12000-15000 g离心1分钟,倒弃收集管中的废液。如果回收的DNA用于盐敏感实验(如平末端连接或直接测序),建议加入通用洗柱液后静置2-5分钟再离心。
8. 12000-15000 g离心半分钟以去除离心柱中的残留液体。
9. 将离心柱吸附置于一新的干净的塑料离心管(自备)中,悬空加入50 uL DNA洗脱液于离心吸附柱硅胶膜的中央。注意:如果回收的DNA用于测序,则可用重蒸水(自备)洗脱DNA。DNA洗脱液可以也用TE替代,但用水或TE替代DNA洗脱液3.0时,回收率可能稍有降低。
10. 静置3分钟后12000-15000 g离心1分钟。
11. 离心管底部所得溶液即为纯化的DNA溶液,可立即用于后续实验或者放-20℃长期保存。如果将所得DNA溶液再次加回到离心吸附柱中,重复洗脱过程,将得到更多的DNA。
12. 用电泳方法或测OD方法确定回收所得DNA的浓度,1 OD260对应的浓度是50ug/mL(对双链DNA)或40ug/mL(对单链DNA),纯净DNA的OD260/OD280比值应该在1.8左右。注意:OD读数跟pH相关,如果用自备的重蒸水洗脱,OD值会低于在DNA洗脱液3.0中测定的数字。
二:PCR或其他酶反应回收
13. 直接在PCR或其他酶反应管中加2倍体积的通用溶胶液2.0,振荡10秒混匀。如果PCR反应中使用了石蜡,需要预先去除。
14. 活化离心吸附柱。在离心吸附柱中加入0.5mL吸附柱活化液,套上收集管后室温放置2分钟,然后12,000 rpm离心2分钟,倒弃穿透液,再将吸附柱套上收集管后待用。活化后的离心吸附柱必须在当天使用。
15. 在上柱前,在反应液和溶胶液的混合液中加入相当于反应体积1/2的异丙醇(对100uL的反应液,加50uL),快速振荡10秒混匀。
16. 直接进入上面胶回收操作的第5步并进行后面的操作。
注意事项
1. 电泳回收DNA时,电泳缓冲液可以用TAE、TBE或者本公司的超快电泳液。回收效果为SuperBuffer-2*好,TAE次之,TBE*差。
2. 通用洗柱液含有容易挥发物质,使用后一定要拧紧瓶盖,密闭保存。
3. 琼脂糖凝胶体积的大小与回收率成反比关系,即体积越大,越不利于回收,一次胶回收以使用100 mg琼脂糖凝胶为宜。
4. 如果在5-10分钟内凝胶溶化不完全,可以适当的延长水浴时间以使胶充分溶化,否则DNA包裹在琼脂糖凝胶中,影响DNA的回收效率。
5. 胶溶化后的液体转移到离心柱后,可以延长静置时间使DNA与膜充分结合,提高回收效率。
6. 洗脱DNA前的空甩很重要,其目的是去除膜上残留酒精,否则残留酒精会影响后续DNA反应。
7. 增大DNA洗脱液使用量有利于回收,但要注意实际上样量与*终回收体积的关系,以便于计算回收率。DNA洗脱液可以用TE或水替代,但回收率稍有降低。
疑难解答
Q:为何用硅胶膜吸附柱法回收TBE胶中的DNA效果不好?
A:因为TBE中的硼酸会跟硅胶表面的OH基团反应,而这些OH又是吸附
DNA所必需的。
关联产品
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